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ICS11

团体标准

T/CSBM 0022—2022

可降解镁基金属骨植入部位的降解、成骨与组织反应的评价方法

2022-09-29发布2022-10-01实施

中国生物材料学会发布

现行 T/CSBM 0022—2022

可降解镁基金属骨植入部位的降解、成骨与组织反应的评价方法

Evaluation method of degradation, osteogenesis and tissue response of degradable Mg-based metal at implant site

公布日期：2022-09-29 发布日期：2022-04-12 实施日期：2022-10-01

所属团体：中国生物材料学会标准发布公告

分类信息

国际标准分类 11 医药卫生技术 -> 11.040 医疗设备 -> 11.040.40 外科植入物、假体和矫形

中国标准分类 -

国民经济分类 C 制造业 -> C35 专用设备制造业 -> C358 医疗仪器设备及器械制造 -> C3581 医疗诊断、监护及治疗设备制造

研制信息

起草单位上海交通大学医学院附属第九人民医院北京大学口腔医学院

起草人孙　皎刘　昕韩建民陆　华郭传宾隋佰延俞懿强邱天成

范围

主要技术内容 1 试验设计 1.1 概述本方法系将医用可降解镁基金属骨植入物植入到试验动物骨组织内一定时间后，在试验的不同时间点，通过影像学和组织学检查，结合图像定量分析，对可降解镁基金属骨植入物的降解性能、成骨能力及植入后局部组织反应进行评价。注∶在进行体内降解试验前宜先按照GB/T 16886.15的要求对植入物进行定性与定量分析。 1.2 样品的制备 1.2.1 试验样品 1.2.1.1 试验样品的物理特性（如形状、表面粗糙度等）可影响材料的降解性能。 1.2.1.2 每一个试验样品都应经过与最终产品相同的制造、处理、清洁、灭菌及包装过程。 1.2.1.3 样品制备和灭菌后，应特别注意在植入前或植入过程中不使其受到擦伤、损坏或任何污染。 1.2.2 参照样品可考虑选择已上市的与目前尚无公认的、适用于可降解镁基金属对照的材料，或与待选可降解镁基金属预期用途一致的、已经被临床所接受的同类材料以评价植入后局部的组织学反应程度，比较材料的降解速率和新骨生成率。 1.2.3 样品形状植入样品可加工成圆柱形、螺钉状或刻有螺纹。 1.2.4 样品尺寸根据所选用动物及其骨组织的大小来决定植入样品的尺寸。注∶原则上应参考GB/T 16886.6-2015的规定，推荐兔胫骨或股骨部位植入，选用直径为2 mm，高为6 mm的圆柱体。 1.3 实验动物和植入部位 1.3.1 实验动物 1.3.1.1 应按照GB/T16886.2和实验动物的国家法规要求选择实验动物并进行饲养，实验动物应自由获取食物和水。 1.3.1.2 骨内植入试验所需时间较长，一般首选新西兰兔，体重不小于2.5kg，雌兔应无孕。 1.3.1.3 应选择足够数量的动物以保证每种检查（脱钙和不脱钙）的每一试验周期至少能获得10个试验样品和10个参照样品的标本数。 1.3.2 植入部位 1.3.2.1 推荐参照GB/T 16886.6-2015规定选择兔的胫骨或股骨部位作为植入部位，也可以考虑模拟临床使用部位或其他适宜的部位。注∶模拟临床使用部位或其他适宜的部位须满足7.1.2分析要求。 1.3.2.2 试验样品与参照样品（若有）应以相同条件分别植入到同一动物的两侧相同解剖部位。选择植入部位时，应确保植入手术不会造成试验部位病理性骨折，对年幼动物应避免将植入物植入到骺区或其他未发育成熟的骨内。 1.4 试验周期 1.4.1 试验周期的确定应根据试验样品的预期用途和降解性能而定。体内动物试验前应事先评估试验样品的降解时间，降解时间可通过体外降解试验或特定环境下的数学模型来推算。原则上试验周期应至少（但不限于）设置3个观察时期，一般应长于试验样品降解和被吸收的时间，或试验周期应能使相应的组织反应达到一个稳定状态。通常应至少（但不限于）设置以下3个时间点∶ a）没有或仅有极少量降解； b）降解过程，推荐包括植入物剩余量约为50%时的时间点； c）组织反应处于稳定状态或植入物几乎完全降解。 1.4.2 植入物的降解率及周围组织结构的改变随时间而变化。对于预期在12周内几乎完全降解的材料，建议选择1周、4周、12周为观察期。 1.4.3 对于预期超过12周完全降解或达到降解稳态的材料，可参考上述原则，依据植入物的降解特性酌情选择试验周期。 2 试验方法 2.1 手术过程 2.1.1 在麻醉和无菌条件下，按常规外科手术要求进行如下手术过程∶ a）于股骨外侧或胫骨内侧部位备皮、消毒、铺巾； b）切开皮肤，分离皮下组织，沿肌肉间隙暴露骨皮质； c）用低转速间歇地钻孔，同时用生理盐水冲洗降温。对于胫骨或股骨部位，一侧钻2个孔，最多3个孔，深度与植入物的长度接近，孔径为2mm，两孔间距不小于10mm； d）清除骨屑； e）将样品轻轻按压植入，使样品表面平于或略低于骨皮质表面，螺纹状植入体旋入孔内； f）逐层缝合肌肉、筋膜和皮肤。 2.1.2 参照样品与对侧同法操作。 2.2 术后临床观察 2.2.1 植入后2周内应每天观察植入部位的皮肤反应情况，有无出血、红肿、气肿和植入物排出等异常现象。 2.2.2 在试验期内定期观察动物的健康状况，记录任何异常发现，包括局部反应及异常行为。 2.2.3 记录死亡的动物数并及时进行尸检，垂死动物及时隔离并处死。 2.3 动物处死观察期结束时用过量麻醉剂无痛处死动物。 2.4 大体观察 2.4.1 目视或用低倍放大镜观察植入部位组织，记录观察到的组织反应的特性和程度，包括血肿，水肿，纤维包裹和/或任何大体发现。记录可观察到的植入物状态，包括表面形态、位置、完整性和残留情况等。 2.4.2 在观察植入部位时，如果动物表现出现病态或对植入物的异常反应，必要时应进行大体尸检。 2.5 取材及组织病理切片制备 2.5.1 基本要求 2.5.1.1 切取的组织标本应包括植入物及其周围足够多的未受到影响的组织。 2.5.1.2 对切取的组织块进行固定，分别采用脱钙和不脱钙2种制片技术制备组织病理切片，以评价植入后局部的组织学反应以及材料的降解和新骨的生成情况。2.5.2 常规组织病理切片制备（脱钙）含植入物的骨组织块取材后应立即置于10%甲醛液及其他适宜的固定方式固定2周后，置于合适的脱钙液中脱钙，然后梯度乙醇脱水、二甲苯透明、石蜡包埋，垂直植入体长轴进行常规制作病理切片，HE 染色。注：脱钙液如EDTA。 2.5.3 硬组织病理切片制备（不脱钙） 2.5.3.1 含植入物的骨组织块取材后应立即置于70%酒精固定1周~2周，然后梯度酒精脱水、二甲苯透明、甲基丙烯酸甲酯溶液渗透1周、聚甲基丙烯酸甲酯包埋。固化后，采用硬组织切片机在皮质骨纤织区域内垂直于植入物的长轴进行切片。研磨抛光至厚度为50μm±10μm，最后使用V-G酸性品红染色，或采用其他适宜的染色方法。 2.5.3.2 同期，取一个未植入的试验样品，用聚甲基丙烯酸甲酯包埋，固化后采用硬组织切片机，垂直于试验样品的长轴进行切片，研磨抛光至厚度为50μm±10μm，用于植入物植入前的横截面总面积的计算。注∶在制作组织切片时，每一植入点切取皮质骨区。 2.6 影像学检查必要时，可采用Micro-CT影像学检查分析金属植入物的三维降解情况，根据设备情况，选择合适的电压、电流和曝光时间，其中有效像素尺寸应不低于10 μm。采用相应的软件计算降解剩余金属和新形成骨的体积。 3 结果评价 3.1 降解与成骨性能 3.1.1 定性分析采用不脱钙的硬组织切片，光学显微镜下观察植入部位植入物是否发生降解和新骨生成，并观察、描述编织骨、板层骨、骨髓等新骨的成熟度。 3.1.2 定量分析 3.1.2.1 植入物剩余量和新骨生成量分析 3.1.2.1.1 运用光学显微镜采集每张试验样品切片的图像，运用图像分析系统，计算植入物植入前的横截面总面积。注∶推荐ImageJ使用软件进行分析。 3.1.2.1.2 采用不脱钙的硬组织切片，首先选中植入区域，使其与植入物植入前的横截面总面积等同，然后选中该区域内需要评价的残余材料或新生骨组织，最后分别定量分析植入物剩余量以及新骨生成量，计算植入物降解率及新骨生成率。注∶植入区以单个镜下视野可完整覆盖整个植入区域为准。 3.1.2.1.3 按式（1）进行计算植入物降解率（DR）∶ DR(%)=(1-RMV/IMV)×100%………………(1) 式中： DR————植入物降解率； RMV————植入物剩余量； IMV————植入物初始量。 3.1.2.1.4 按式（2）进行计算新骨生成率（RNBF）∶ RNBF(%)=NBFV/IMV×100%………………(2) 式中： RNBF————新骨生成率； NBFV——新骨生成量； IMV————植入物初始量。 3.1.2.2 植入物降解率平均值按式（3）计算植入物降解率平均值∶ P1=SDR/10……………………………(3) 式中： P1————植入物降解率平均值； SDR————各植入点植入物降解率的总和。 3.1.2.3 新骨生成率平均值按式（4）计算新骨生成率平均值∶ P2=SRNBF/10……………………………(4) 式中： P2————新骨生成率平均值； SRNBF——各植入点新骨生成率的总和。 3.2 局部组织学反应 3.2.1 组织学观察（定性） 3.2.1.1 采用脱钙的硬组织切片，在光学显微镜下观察并比较试验样品与参照样品周围的组织反应。至少需要观察的指标应包括∶ a）植入物周围气腔形成; b）肉芽组织、纤维化和纤维囊腔形成； c）炎性反应程度： 1）炎性充血； 2）炎细胞浸润的数量、分布及种类。注∶炎细胞包括嗜中性白细胞、淋巴细胞、浆细胞、巨噬细胞及多核巨细胞。 d）组织变性及坏死的存在、范围及程度； e）血管分布、脂肪浸润及新骨形成。 3.2.1.2 采用不脱钙的硬组织切片，在光学显微镜下，观察的指标应包括∶ a）材料的破裂和/或存在碎片、材料降解残留物的形状和位置； b）植入物与周围组织之间的界面； c）材料周围组织中气腔形成情况。 3.2.2 组织学反应半定量分级参照GB/T 16886.6-2015附录E的组织学反应记分系统对试验样品的组织切片分别记分。 3.3 影像学分析必要时，采用配套的软件分析金属残留体积，并绘制金属植入物体积与时间曲线。计算新生骨体积（V1）占骨质缺损区域（V0）的体积比例（△V），计算公式为: △V=V1/V0×100%……………………………………(5) 式中： △V——新生骨体积占骨质缺损区域的体积比例； V1————新生骨体积; V0————骨质缺损体积。注1骨质缺损体积（V0）一般是指骨缺损修复前或骨缺损制备的体积，可根据缺损的尺寸大小计算或者参考空白对照计算获得。注2∶新生骨体积（V1）是指骨质缺损区域内灰度值在一定区间内的部分，新生骨灰度值区间需自行定义。设备不同、拍摄参数不同、拍摄样品的大小和植入部位不同、植入材料的阻射值不同，其新生骨灰度值也不同，因此在计算新生骨体积时应尽量减少剩余材料的干扰。 4 试验报告试验报告应包括详细的数据资料，以能够对结果作出独立的评价。试验报告应注明检测机构和检测日期，应报告下列项目: a）植入样品 1）分别描述试验样品和参照样品的外形、尺寸和数量； 2）样品的处理过程，包括所采用的清洗、处理和灭菌技术（若有）。注∶如果样品不是在本实验室制备，在检测开始之前，生产厂家应提供这些资料。b）动物与植入 1）动物的种属、品系、来源、年龄、性别和体重，检测期间的环境条件，动物饮食及动物状况，以及检测期间包括意外死亡在内的所有观察发现； 2）植入方法以及每个动物和每一部位植入物的数量。 c）取样与组织学制备∶ 1）所采用的取样方法，记录每只动物、每一观察期植入物取到的数量；注:所有样品都应作为试验的一部分。 3）植入部位的大体观察，所采用的组织学切片制备技术。 d）肉眼和显微镜观察∶ 1）每一植入物的观察情况以及植入物周围组织的大体外观； 2）详细描述并比较评价脱钙组织切片中的组织学反应及反应分级情况； 3）分别报告试验样品和参照样品（若有）的植入物降解率总平均值与标准差、新骨生成率总平均值与标准差、实验组和对照组降解和成骨结果的统计学分析，以及新骨成熟度的典型病理图片。 e）结果评价∶报告应包括对可降解镁基金属骨植入部位的降解率、新骨生成率以及局部组织学反应作出总体评价。

适用范围

是否包含专利否

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